ВЫДЕЛЕНИЕ В ЧИСТУЮ КУЛЬТУРУ ШТАММОВ РИЗОБИЙ ИЗ КЛУБЕНЬКОВ КОРНЕЙ ВИГНЫ И СОИ

Аннотация

Дальневосточные природные популяции ризобий – это значимый природный ресурс, позволяющий вести отбор наиболее ценных по хозяйственно полезным свойствам штаммов. Детальное изучение морфолого-культуральных, физиологических и хозяйственно полезных свойств чистых культур ризобий, выделенных из дальневосточных популяций этих микроорганизмов, позволяет выявить наиболее ценные штаммы для сохранения в коллекции. Цель исследований – выделение из дальневосточных природных популяций клубеньковых бактерий сои чистых культур B. elkanii, изучение отдельных культуральных и биохимических свойств этих микроорганизмов. В результате исследования из клубеньков вигны двух видов и сортообразцов сои было выделено в чистую культуру 29 штаммов ризобий, предположительно отнесённых к B. elkanii. Проведена предварительная оценка роста этих штаммов на средах МДА с маннитом и лактозой, а также на контрольной среде МПА. Установлено, что интенсивность роста штриха чистой культуры изучаемых штаммов ниже при посеве на питательную среду с лактозой, чем с маннитом, и отличается большей вариабельностью (Cv = 30,3 %). На контрольной среде МПА 48 % исследованных штаммов не показали рост. Дальнейшее изучение свойств вновь выделенных штаммов ризобий позволит отобрать лучшие для дальнейшего использования.

Ключевые слова: B. elkanii, V. radiata, V. unguiculata, клубеньки, клубеньковые бактерии сои, соя, чистая культура, штамм

Об авторах

Список литературы

1. Дюкова Н. Н., Скипин Л. Н., Логинов Ю. П. Селекция на симбиоз клубеньковых бактерий и растений люцерны [Электрон. ресурс] // АгроЭкоИнфо: Электронный научно-производственный журнал. 2022. № 6. https://doi.org/10.51419/202126626
2. Kumar S., Jakhar D. S., Singh R. Growth and Yield Response of Mung Bean (Vigna radiata L.) in Different Levels of Potassium // Acta Scientific Agriculture. 2018. Vol. 2. №. 6. P. 23–25.
3. Youseif S. H., Abd El-Megeed F. H., Saleh S. A. Improvement of Faba Bean Yield Using Rhizobium / Agrobacterium Inoculant in Low-Fertility Sandy Soil // Agronomy. 2017. Vol. 7. № 2. P. 1–12. https://doi.org/10.3390/agronomy7010002
4. Diversity and evolution of Bradyrhizobium communities relating to Soybean cultivation: A review / P. Saranraj [et al.] // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. IOP Publishing, 2021. Т. 788. № 1. С. 012208. https://doi.org/10.1088/1755-1315/788/1/012208
5. A general non-self response as part of plant immunity / B. A. Maier [et al.] // Nature Plants. 2021. Т. 7. № 5. P. 696–705. https://doi.org/10.1038/s41477-021-00913-1
6. Синеговский М. О., Антонова Н. Е. Экономика производства сои: учёт сортовых и региональных особенностей: монография. Благовещенск: ИПК «ОДЕОН», 2018. 128 с.
7. Co-inoculation of Bradyrhizobium stimulates the symbiosis efficiency of Rhizobium with common bean / E. da C. Jesus, R. de A. Leite, R. do A. Bastos [et al.] // Plant Soil. 2018. № 425. P. 201–215. https://doi.org/10.1007/s11104-017-3541-1
8. Sirithanakorn C., Cronan J. E. Biotin, a universal and essential cofactor: synthesis, ligation and regulation // FEMS Microbiology Reviews. 2021. Vol. 17; № 45(4). fuab003. https://doi.org/10.1093/femsre/fuab003
9. Система земледелия Амурской области / отв. ред. В. А. Тильба. Благовещенск: ПКИ «Приамурье», 2003. 304 с.
10. Genetic diversity of rhizobial strains isolated from the relict legumes Gueldenstaedtia monophylla and G. verna growing in the republics of Altai and Buryatia (Russia) / D. Karlov, A. Sazanova, P. Guro, I. Kuznetsova, A. Verkhozina, A. Belimov, V. Safronova // Biological Communications. 2022. № 67(3). P. 141–151. https://doi.org/10.21638/ spbu03.2022.301
11. Bosea caraganae sp. nov., a new species of slow-growing bacteria isolated from root nodules of the relict species Caragana jubata (Pall.) Poir. originating from Mongolia / A.  L. Sazanova, V.  I. Safronova, I.  G. Kuznetsova, D.  S. Karlov, A.  A. Belimov, E.  E. Andronov, E.  R. Chirak, J.  P. Popova, A.  V. Verkhozina, A. Willems, I.  A. Tikhonovich // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2019. Т. 69. № 9. P. 2687–2695. https://doi.org/10.1099/ ijsem.0.003509
12. Genetic di-versity in Bradirhizobium japonicum Jordan 1982 and a proposal for Brady-rhizobium elkanii sp. nov / L. D. Kuykendall, B. Saxena, T. E. Devine, S. E. Udell // Canadian Journal of Microbiology. 1992. Vol. 38. P. 501–505.
13. Improvement of rhizobium‐soybean symbiosis and nitrogen fixation under drought / T. Kibido [et al.] // Food and Energy Security. 2019. Т. 9. № 2. 177 р. https://doi.org/10.1002/fes3.177
14. Jordan D. C. Transfer of Rhizobium japonicum Buchanan 1980 to Bradirhizobium gen.nov a genus of slow-growin, root nodule bacteria from leguminous plants // International Journal of Systematic Bacteriology, 1982. Vol. 32. P. 136–139.
15. Бегун С. А. Способы, приёмы изучения и отбора эффективных штаммов клубеньковых бактерий сои. Методы аналитической селекции: методические рекомендации. Благовещенск: ПКИ «Зея», 2005. 70 с.
16. Бегун С. А., Садовская Е. В. Определение вирулентности новых штаммов Rhizobium japonicum // Научно-технический бюллетень «Повышение симбиотической азотфиксации сои». Новосибирск, 1987. Выпуск 33. C. 42–49.
17. Якименко М. В., Бегун С. А., Иванова О. Г. Новые штаммы ризобий, выделенные из почв Магаданской области, и их физиолого-культуральные свойства // Земледелие. 2017. № 6. C. 3–6.
18. Devine T.E., Kuykendall S. D., O`Neill I. I. DNA hamology group and the identity of bradyrhizobial strans producing rhizobitoxine – induced chlorosis of soybeans // Crop Science. 1988. Vol. 28. P. 939-941.